更新時(shí)間:2024-09-26
PAS糖原染色(Periodic Acid-Schiff stain)在組織學(xué)上,主要用來(lái)檢測(cè)組織中的糖類(lèi)。過(guò)碘酸把糖類(lèi)相鄰兩個(gè)碳上的羥基氧化成醛基,再用Schiff試劑和醛基反應(yīng)使呈現(xiàn)紫紅色。
PAS糖原染色又稱(chēng)過(guò)碘酸雪夫染色,糖原染色。一般用來(lái)顯示糖元和其它多糖物質(zhì)。
原理:過(guò)碘酸能使細(xì)胞內(nèi)的多糖乙二醇基氧化成二醛,再與Schiff氏液的無(wú)色品紅結(jié)合,紅色,定位于胞漿上。
PAS糖原染色方法:
固定液
Carnoy固定液: 純
無(wú)水乙醇60 ml 冰醋酸10ml,也可以選用75%無(wú)水乙醇。
PAS糖原染色液配制
1) 過(guò)碘酸酒清夜配法:
過(guò)碘酸(HIO4·2H2O) 0.4g 95% 無(wú)水乙醇 35ml M/5醋酸鈉(2.72g+蒸餾水100ml) 5ml蒸餾水10ml。
保存于冰箱內(nèi),用棕色瓶,可用兩周。
2)Schiff氏液:0.5克堿性品紅加入100毫升蒸餾水中,時(shí)時(shí)搖動(dòng)三角瓶5分鐘,使之充分溶解。冷卻至50℃后過(guò)濾加入10毫升1N鹽酸,冷卻至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸鈉,在室溫中至少靜置24小時(shí),然后密封冰箱保存。
3) Schiff氏 無(wú)水乙醇配置 Schiff氏液 11.5ml 1N HCI 0.5ml 純無(wú)水乙醇 23ml
4) 亞硫酸水 1%偏重亞硫酸鈉10ml 1N HCI 10ml 蒸餾水 180ml的樹(shù)膠溶解。
5)哈瑞或邁耶蘇木精
PAS糖原染色步驟:
1. 石蠟切片脫蠟至水(細(xì)胞涂片,冰凍切片直接水洗);
2. 蒸餾水洗;
3. 過(guò)碘酸酒清夜10min;
4. 自來(lái)水沖洗10min;
5. Schiff氏液10min;
6. 流水沖洗5min;
7.用哈瑞蘇木精或邁耶蘇木精染核3min(細(xì)胞核染色過(guò)深可用鹽酸酒精分化);
8. 流水沖洗5min;
9. 常規(guī)脫水、透明、封固。
結(jié)果
PAS陽(yáng)性為紅色,細(xì)胞核藍(lán)色。
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